糖化血红蛋白检验的干扰因素分析

糖化血红蛋白检验的干扰因素分析

秦小玉1李峰2王勇1通讯作者

（1.江苏省泰兴市第三人民医院225400；2.江苏省泰兴市燕头社区卫生服务中心225400）

摘要：糖化血红蛋白（HbA1c）是为糖尿病的诊断标准和切点，是公认可反映血糖控制情况的金标准。本文从HbA1c优越性和局限性两大方面分别进行综述。

关键词：糖化血红蛋白；优越性；局限性

国内检测HbA1c仪器琳琅满目，为进一步了解我国HbA1c的检测现状，给予临床提供更客观、精确的参考数据，2011年由中华医学会糖尿病学分会在全国范围内选择了具有代表性的606家医院对其检测HbA1c的仪器型号及测定方法进行了统计研究，各医院最常用检测方法是离子交换高效液相色谱（HPLC，219，37．2％）法，其次分别为免疫法（169，28．9％）和即时检验法（POC，81，13．9％），且参研单位中有超过1／5的实验室使用未经NGSP认证的仪器[1]。近年来，床旁检测（POCT）糖化血红蛋白法为临床提供了快速便捷的检测结果，使用在全球得到了蔓延，主要利用硼酸亲和原理和免疫反应原理进行快速检测。HbA1cPOCT仪器的出现为患者的HbA1c监测带来了诸多的便利，但是其性能是目前临床实验室难以控制的，精密度和准确度相对其他方法要差，严格规范化操作，才能保证HbAlcPOCT的质量[2-3]。

1.检测HbA1c的干扰因素

1.1血液疾病及贫血者所有影响红细胞生成及寿命的疾病均可影响HbAIc的测定。能够使红细胞寿命增加的因素，如脾切除术后、红细胞清除率降低、生成的网织红细胞减少、再生障碍性贫血等均能增加血液中HbA1c的水平；能够使能够使红细胞寿命降低的因素，如活动性出血、网织红细胞生成增多、透析者均能使红细胞寿命降低，使测得的HbA1c水平偏低。

1.2样本使用抗凝管、保存时间及温度临床上测定HbA1c的标准用管常用EDTA-K2抗凝管，据报道[4-5]采用EDTA-K2、肝素、枸橼酸钠1：4、枸橼酸钠1：9抗凝管对HbA1c检测结果无统计学差异，但肝素抗凝检测结果会高于EDTA-K2和枸橼酸钠检测结果的5%左右，这可能与抗凝机制有关。据研究报告[6-7]对不同温度条件下贮存的全血标本进行了检测，证实若全血标本不能及时检测，可在4-8℃保存50d，其检测结果不会有明显变异；若保存在-20℃，应于25d进行检测；若保存在室温（17-23℃），应于7d内进行检测。大多数检测样本可在-70℃保存一年[8]，但在0-14d内测定，4℃保存的测定结果优于-20℃的结果[9]。为保证获取准确的结果，给予临床精确的数据，样品获得后应尽快完成测定。

1.3Hb变异体及异常的化学衍生物异常的Hb大多数为a、β或γ链上点突变，常见的有HbF、HbS、HbC、HbE等，这种突变使红细胞变形性降低，缩短了红细胞的寿命。氨甲酰化Hb和乙酰化Hb都会影响HbA1c的检测[10]。

1.4药物与妊娠SaudekCD[11]研究表明，维C、维E及使用氨苯砜者可使HbA1c测定结果降低。妇女在妊娠期间血容量会增加，容量自妊娠6-8周开始增加，至32-34周达高峰，并维持至产后2-3周；妊娠期血容量约增加30-40%，约1000ml，其中血浆增加约40-50%，红细胞增加约18-30%，血浆的增加多于红细胞的增加，形成血液相对稀释，导致Hb生理性降低，因此HbA1c测定结果会低于非妊娠妇女。

1.5年龄、种族与地域SacksCD等[12]研究表明，在30岁后，年龄每增加一岁，HbA1c将增加0.1%。Herman[13]研究证明，种族之间HbA1c平均水平有差异。有报道[14]指出高海拔地区人群与平原、低海拨地区人群所测得的Hb水平有差异。海拔高度与Hb水平呈正相关，人体内Hb水平随海拔升高而升高，高原低氧环境是影响Hb水平变化的主要因素。

1.6仪器设备及规范操作实验室仪器维护、准备试剂以及检验人员规范操作等都影响着检测结果的准确性，实验室应加强对分析前、分析中、分析后的质量管理，定期维护仪器，做好质量控制，此乃重中之重。

参考文献

[1]刘蔚，纪立农.2011年全国糖化血红蛋白检测仪器现况调查[J].中国糖尿病杂志，2013，21（8）：682-685.

[2]杨雪，王薇，王治国.8种糖化血红蛋白床旁检测仪性能的分析[J].中国糖尿病杂志，2013，21（8）：695-698.

[3]鄢斌.糖化血红蛋白即时检验的质量控制[J].现代检验医学杂志，2007，22（4）：109-110.

[4]曹晶晶，彭俊华，殷瑞鹏，等.影响糖化血红蛋白检测结果的因素分析[J].现代检验医学杂志，2012，27（5）：75-76.

[5]史晓丹，蔡淑敏.不同的采血时间不同的抗凝剂对糖化血红蛋白测定的影响[J].中国社区医师：医学专业，2011，13（1）：129.

[6]潘玥，何泳，史亚明.全血标本的贮存条件对糖化血红蛋白测定结果的影响[J].中国全科医学，2010，9（13）：2988-2989.

[7]蔺晰，吕连峥，夏永祥.糖化血红蛋白贮存条件的探讨[J].国际检验医学杂志，2013，34（12）：1566-1568.

[8]JonesW，ScottJ，LeafyS，eta1．Stabilityofwholebloodat-70degreesCformeasurementofhemoglobinA（1c）inhealthyinpiduals．ClinChem，2004，50：2460-2461．

[9]张家淮，余辉艳，崔虹霞，等.保存条件对糖化血红蛋白测定影响的探讨[J].2013，20（6）：431-433.

[10]李卿，居漪.糖化血红蛋白检测方法和干扰因素[J].临床检验杂志，2012，30（6）：418-420.

[11]audekCD，HermanWH，SacksDB，etal．Anewlookatscreeninganddiagnosingdiabetesmellitus．JClinEndocrinolMetab，2008，93：2447—2453．

[12]SacksDB，BransDE，GoldsteinDE，eta1．Guidelinesandrecommendationsforlaboratoryanalysisinthediagmesisandmanagementofdiabetesmellitna．ClinChem．2002．48：436_472．

[13]HermanWH，MaY，UwaigoG，etal.RacialandethnicdifferencesinbemoglobinA1camongPatientswithimpairedglucosetoleranceintheDiabetesPreventionProgram[J].DiabetesCare，2007，30（23）：2756-2758.

[14]于秀娟，殴超伟.糖化血红蛋白检测的影响因素及临床意义[J].中国老年学杂志，2013，33（19）：4930-4933.